Échantillonnage de gaz émis par les sols de prairies permanentes drainées ou non au sein de la Zone Atelier Armorique (ZAAr) et analyses des Composés Organiques Volatils (COVs - spectres de masses et flux) et flux de CO2. Données pédoclimatiques associées.

Limite des parcelles agricoles sur la Zone Atelier Armorique (Pleine-Fougères) réactualisée pour l'année 2017 par le LETG Rennes. Couche élaborée par photo-interprétation réalisée à partir d'orthophoto et d'images Pléiades acquises durant l'hiver 2016-2017. Cette couche comprend l'ensemble du parcellaire (agricole et non agricole) de la ZAAr, cependant la réactualisation a été effectuée uniquement sur la partie agricole.

En 2019, 40 parcelles et 40 bordures de champs attenantes ont été sélectionnées, distribuées le long de la zone Armorique Sud : 20 parcelles ont été cultivées en céréales pures (blé, seigle ou triticale) et 20 parcelles en mélanges de céréales (blé, orge, épeautre...) et légumineuses (féverole, pois, vesse). Toutes les cultures ont été sélectionnées dans des exploitations en AB. Le terme « échelle locale » comprend un sous-échantillonnage de 18 parcelles échantillonnées le long de la ZA Sud (10 en mélange céréales/légumineuses, 8 en céréales), alors que le terme « échelle du paysage » comprend les 40 parcelles. Les pollinisateurs ont été séparés visuellement en 4 groupes : les abeilles domestiques, les bourdons, les abeilles sauvages et les syrphes. Ces groupes d'insectes ont été comptabilisés le long de deux transects parallèles de 50 mètres de longueur et 2 mètres de largeur (soit 100 m²), un le long de la bordure de champ et le deuxième à 50 m de la bordure dans la parcelle (ou au centre de la parcelle si la largeur de parcelle était < 100 m). Les comptages distinguent les insectes en nutrition sur une fleur (féverole, pois, adventice, flore spontanée de la bordure), sur le nectar-extra-floral de féverole, au repos (posés sur une partie végétative de la plante) ou en vol. Le comptage visuel a été réalisé à allure régulière pendant une durée minimale de 5 minutes (temps pour parcourir 50 mètres à faible allure sans insectes). Pour l’échelle paysagère, 3 sessions de relevés ont été réalisées entre mai et juillet (après récolte). Pour l’échelle locale, seuls les champs ont été échantillonnés (sans leur bordure), avec six sessions de relevés sur une période allant de début avril à mi-juin 2019 (récolte des cultures) suivant une fréquence d’un relevé tous les 15 jours.

Objectif : Ces données, issues d’une thèse (Andrade 2013), portent sur l’analyse des dimensions spatiales et temporelles du fonctionnement et de la diversité taxonomique et fonctionnelle d’une guilde écologique. Protocole : Collecte de momies (à vue dans le champ). Détermination des émergents sous loupe binoculaire. Construction du réseau trophique (2 méthodes : -R : .package "bipartite". http://cran.r-project.org/web/packages/bipartite/bipartite.pdf. Avec ce package, on peut assez rapidement construire un RTQ (réseau trophique quantitatif) avec une matrice du type hôte x parasitoïde, et la commande plotweb. -Méthode Editeur d’images : La méthode que j'ai utilisée exige un logiciel d'édition d'images. J'ai choisi d'utiliser Artweaver ( http://www.artweaver.de/en ), qui est un petit logiciel simple, efficace et gratuit. Sous ce logiciel, je commence par créer des barres de 50 pixels de hauteur et de X pixels de longueur, X correspondant au nombre de hôtes ou de parasitoïdes d'une espèce donnée dans mon réseau. Ensuite, pour créer les flèches, je commence par créer des barres de 2 pixels de hauteur x Y pixels de longueur, où Y est proportionnel au nombre d'interactions hôte-parasitoïde. Quand toutes les barres ont été correctement positionnées (à l'aide de la grille sous Artweaver, par exemple), je trace des flèches à partir des bases grises (barres de 2 pixels de hauteur), formant des triangles dont un angle se situe au milieu de chaque barre de parasitoïde. Ces flèches sont ensuite remplies. Le réseau trophique est disponible dans la thèse (lien ci-dessous). Article de référence : thèse de doctorat de l’université de Rennes 1. Thiago Andrade 2013. (http://tel.archives-ouvertes.fr/index.php?halsid=lnrmlg478b4ubl8k7lm7k7am36&view_this_doc=tel-00971811&version=1) Programme de recherche : Projet ANR Landscaphid (2010-2013)

Voir thèse de Solene Croci, 2007 Travaux effectués dans le cadre du programme ECORURB

En 2019, 42 parcelles de céréales ont été échantillonnées, 21 en agriculture conventionnelle (AC) et 21 en agriculture biologique (AB). Les abondances de pucerons des céréales ont été mesurées sur 50 plants de céréales (qui comportent plusieurs thalles), dont 25 dans la section de 0 à 10m du bord de champ, et 25 de 10 à 50m. Sur chacun des plants, les pucerons ont été comptés et identifiés à l’espèce, en distinguant les adultes aptères, les adultes ailés et les larves. Trois espèces de pucerons peuvent être trouvées sur céréales : Sitobion avenae, Rhopalosiphum padi et Metopolophium dirhodum. La hauteur de la culture (5 mesures) et le recouvrement ont aussi été effectués au centre et au bord des parcelles. L’échantillonnage a été effectué deux fois au cours de la saison 2019, en mai et en juin.

Vegetation classification of potential wetlands of the Couesnon watershed in 9 EUNIS classes. Classification was made from Sentinel-1 and Sentinel-2 time-series of 2016-2017 vegetation cycle and 355 plot samples (90 from field and 265 from visual observation of Sentinel-2 color composite or Google Earth imagery) splited into the 9 classes. Random forest classification was applied on R. Classes description and EUNIS code associated 1 : Constructed, industrial and other artificial habitats J 2 : Intensive unmixed crops I1.1 3 : Inland surface water C 4 : Mixed riparian floodplain and gallery woodland G1.2 5 : Atlantic and sub-Atlantic humid meadows E3.41 6 : Species-rich helophyte beds C3.1 7 : Coastal saltmarshes and saline reedbeds A2.5 8 : Water-fringing reedbeds and tall helophytes other than canes C3.2 9 : Raised bogs D1.1