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ECOBIO UMR 6553 CNRS Université de Rennes

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    Projet Fleur 2015-2018 : données décembre 2015- mars 2018 Echantillonnage de ravageurs et de leurs ennemis naturels dans les champs de céréales et deux types d'habitats adjacents, marges herbeuses et bandes fleuries semées. Echantillonnage en période hivernale de Décembre à mi-Mars. Les limaces ont été échantillonnées dans les parties de culture proche des habita.ts adjacents et au sein de ces derniers. L'échantillonnage a été réalisé par pièges barbers

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    Projet Fleur 2015-2018 : données décembre 2015- mars 2018 Echantillonnage de raveurs et de leurs ennemis naturels dans les champs de céréales et deux types d'habitats adjacents, marges herbeuses et bandes fleuries semées. Echantillonnage en période hivernale de Décembre à mi-Mars. Les organismes ont été échantillonnés par piège barbers, placés dans la culture proche des habitats adjacents et au sein de ces derniers

  • Mesures piézométriques: carte des emplacements (couche SIG) et relevés (archive au format .csv)

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    Projet Fleur 2015-2018 : données décembre 2015- mars 2018 Echantillonnage de pucerons et de leurs ennemis naturels dans les champs de céréales et deux types d'habitats adjacents, marges herbeuses et bandes fleuries semées. Echantillonnage en période hivernale de Décembre à Mars. échantillonnage de carabes, araignées et staphylins dans les parties de culture proche de chaque habitat adjacent et au sein de ces derniers. Les prédateurs du sol ont été échantillonnés par piège barber dans tous les habitats.

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    Occupation du sol des parcelles observées dans le cadre du projet PLANTSERV, 2019-2021

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    Importance des bandes enherbées dans le fonctionnement de la communauté des syrphes entomophages en sein des paysages agricoles Protocole : 10 couples de parcelles de blé échantillonnées : 10 avec présence de BE et 10 sans BE. Pour les 20 parcelles : 3 pièges jaune par parcelle à 20m de la bordure. Pièges distants de 10m Pour les 9 BE : 2 pièges jaunes espacés de 10m. Suivis de mi avril à mi juillet 2008 Article de référence : Ernoult A, Vialatte A, Butet A, Michel N, Rantier Y, Jambon O, Burel F (2013). Grassy strips in their landscape context, their role as new habitat for biodiversity, Agriculture, Ecosystems & Environment, 166: 15-27 Programme interdisciplinaire CNRS CEMAGREF Ingénierie Écologique

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    This dataset includes data related to the cold tolerance as well as the physiological readjustments in response to different gradual and developmental acclimation of females D. suzukii. In each acclimation type, experiments were conducted in the lab and the ecological relevance was verified with experiments in the field. This dataset provides critical thermal minimum, chill coma recovery time and acute stress survival data, in addition to metabolomic data performed on GC-MS and GC-HRMS.

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    Projet Fleur 2015-2018 : données Décembre 2015 - Mars 2018 Echantillonnage de pucerons et de leurs ennemis naturels dans les champs de céréales et deux types d'habitats adjacents, marges herbeuses et bandes fleuries semées. Echantillonnage en période hivernale de Décembre à mi-Mars. Dans la culture : échantillonnage de pucerons parasités et non-parasités par relevé exhaustif de surface de 15m² proche bandes herbeuses et proche bandes fleuries. Dans la bande fleurie les pucerons ont été échantillonnés par relevé sur 5 plants par espèce de fleurs.

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    En 2019, 40 parcelles et 40 bordures de champs attenantes ont été sélectionnées, distribuées le long de la zone Armorique Sud : 20 parcelles ont été cultivées en céréales pures (blé, seigle ou triticale) et 20 parcelles en mélanges de céréales (blé, orge, épeautre...) et légumineuses (féverole, pois, vesse). Toutes les cultures ont été sélectionnées dans des exploitations en AB. Le terme « échelle locale » comprend un sous-échantillonnage de 18 parcelles échantillonnées le long de la ZA Sud (10 en mélange céréales/légumineuses, 8 en céréales), alors que le terme « échelle du paysage » comprend les 40 parcelles. Les pollinisateurs ont été séparés visuellement en 4 groupes : les abeilles domestiques, les bourdons, les abeilles sauvages et les syrphes. Ces groupes d'insectes ont été comptabilisés le long de deux transects parallèles de 50 mètres de longueur et 2 mètres de largeur (soit 100 m²), un le long de la bordure de champ et le deuxième à 50 m de la bordure dans la parcelle (ou au centre de la parcelle si la largeur de parcelle était < 100 m). Les comptages distinguent les insectes en nutrition sur une fleur (féverole, pois, adventice, flore spontanée de la bordure), sur le nectar-extra-floral de féverole, au repos (posés sur une partie végétative de la plante) ou en vol. Le comptage visuel a été réalisé à allure régulière pendant une durée minimale de 5 minutes (temps pour parcourir 50 mètres à faible allure sans insectes). Pour l’échelle paysagère, 3 sessions de relevés ont été réalisées entre mai et juillet (après récolte). Pour l’échelle locale, seuls les champs ont été échantillonnés (sans leur bordure), avec six sessions de relevés sur une période allant de début avril à mi-juin 2019 (récolte des cultures) suivant une fréquence d’un relevé tous les 15 jours.

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    Title: Necrosis is a major driver of thermal stress-induced mortality in Drosophila melanogaster larvae: cellular and molecular insights across acclimation phenotypes Authors: Fatemeh Saeidi & Hervé Colinet Affiliation: Université de Rennes, CNRS, ECOBIO (Ecosystèmes, biodiversité, évolution) – UMR 6553, 35000 Rennes, France This repository contains raw data files (in .txt format) associated with the study investigating cell death dynamics induced by cold (-3°C) and heat (38°C) stress in third-instar Drosophila melanogaster larvae. The study compared three acclimation phenotypes: - LNA: Non-acclimated larvae (reared at 25°C for 4 days) - LCA: Cold-acclimated larvae (reared at 15°C for 10 days) - LHA: Heat-acclimated larvae (reared at 30°C for 3 days) All data files are in tab-delimited text format (.txt). For detailed statistical methods, please refer to the Materials & Methods section of the associated manuscript. LNA : Non-acclimated larvae (reared at 25°C for 4 days) LCA : Cold-acclimated larvae (reared at 15°C for 10 days) LHA : Heat-acclimated larvae (reared at 30°C for 3 days) BS : Black spots (melanized lesions) NBS : No black spots Co : Unstressed control CTCF : Corrected total cell fluorescence ROS : Reactive oxygen species GLM : Generalized linear model GLMM : Generalized linear mixed model PCA : Principal component analysis RpL32 : Reference gene used for normalization